免疫印迹(WB)检测(总蛋白)
Western Blot基于SDS-PAGE电泳分离蛋白和抗原-抗体特异性结合两大核心原理:
电泳分离:SDS(十二烷基硫酸钠)使蛋白质带负电荷,在聚丙烯酰胺凝胶中按分子量大小迁移。
转膜:将凝胶中的蛋白条带转移到固相膜(如PVDF或NC膜)上,便于后续抗体结合。
抗体检测:一抗特异性结合目标蛋白,二抗(偶联酶或荧光基团)结合一抗,通过底物显色或化学发光检测信号。
详细实验步骤
1. 样本制备
关键点:保持蛋白完整性,避免降解!
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细胞样本:
1) 细胞裂解:使用预冷的RIPA裂解液(含蛋白酶抑制剂),冰上裂解30分钟。
2) 离心:4℃、12000×g离心15分钟,取上清。
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组织样本:
1) 液氮研磨组织至粉末,加入裂解液匀浆。
2) 同上离心取上清。
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定量:BCA法测定蛋白浓度,调整至统一浓度(如2μg/μL)。
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变性:加入5×SDS上样缓冲液,95℃煮样5-10分钟,-20℃保存备用。
⚠️ 注意事项:
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全程冰上操作,防止蛋白降解!
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裂解液需新鲜加入蛋白酶抑制剂(如PMSF)。
2. 配胶(SDS-PAGE凝胶制备)
关键点:根据目标蛋白分子量选择凝胶浓度(参考下表):
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蛋白分子量范围 (kDa) |
分离胶浓度 (%) |
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<10 |
15-20% |
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10-40 |
12% |
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40-100 |
10% |
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>100 |
6%-8% |
操作步骤:
1) 分离胶配制(以10%为例):
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蒸馏水 4.0 mL
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30%丙烯酰胺 3.3 mL
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1.5M Tris-HCl (pH8.8) 2.5 mL
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10% SDS 0.1 mL
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10% APS 0.1 mL
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TEMED 0.004 mL
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混匀后迅速灌胶至距梳齿1cm处,覆盖异丙醇或ddH2O压平胶面。
2) 浓缩胶配制(5%):
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蒸馏水 2.7 mL
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30%丙烯酰胺 0.67 mL
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1.0M Tris-HCl (pH6.8) 0.5 mL
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10% SDS 0.04 mL
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10% APS 0.04 mL
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TEMED 0.004 mL
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混匀后灌胶,插入梳子。
⚠️ 注意事项:
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丙烯酰胺有神经毒性,戴手套操作!
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APS和TEMED需现用现加,促进聚合。
3. 上样与电泳
操作步骤:
1) 将凝胶装入电泳槽,加入电泳缓冲液(1×Tris-Glycine-SDS)。
2) 每孔上样10-30μg蛋白(根据目标丰度调整),留一孔加预染蛋白Marker。
3) 电泳条件:
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浓缩胶阶段:80V恒压,约20分钟(溴酚蓝跑出浓缩胶)。
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分离胶阶段:120V恒压,至溴酚蓝到达胶底部(约1-1.5小时)。
⚠️ 注意事项:
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上样前需离心样本去除气泡。
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电泳缓冲液可重复使用3-4次。
4. 转膜(湿转法为例)
关键点:确保蛋白高效转移至膜上!
操作步骤:
1) 裁剪PVDF膜和滤纸至凝胶大小,PVDF膜需提前用甲醇激活15秒。
2) 组装转膜“三明治”结构(从负极到正极):
海绵垫 → 滤纸 → 凝胶 → PVDF膜 → 滤纸 → 海绵垫
3) 转膜条件:
恒流200-300mA,转膜时间根据蛋白分子量调整(100 kDa以下:1小时;100 kDa以上:1.5-2小时)。
4) 转膜后,用丽春红染色观察转膜效果(可选)。
⚠️ 注意事项:
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转膜全程在冰浴中进行,防止过热导致蛋白变性。
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膜与凝胶间避免气泡(可用滚轮赶出气泡)。
5. 封闭
目的:减少非特异性结合。
操作步骤:
1) 将膜浸入5%脱脂牛奶(TBST配制),室温摇床封闭1小时。
2) 封闭后,TBST洗膜3次,每次5分钟。
⚠️ 注意事项:
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磷酸化蛋白检测建议使用5% BSA封闭。
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封闭时间过长可能导致信号减弱。
6. 一抗孵育
操作步骤:
1) 一抗稀释:按说明书比例(通常1:1000)用封闭液稀释。
2) 将膜与一抗溶液置于4℃孵育过夜(或室温2小时)。
3) TBST洗膜3次,每次10分钟。
⚠️ 注意事项:
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一抗可回收保存(-20℃),重复使用3-5次。
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磷酸化抗体需4℃孵育过夜以提高灵敏度。
7. 二抗孵育
操作步骤:
1) HRP(辣根过氧化物酶)标记的二抗稀释(通常1:5000-1:10000),用封闭液配制。
2) 室温摇床孵育1小时。
3) TBST洗膜3次,每次10分钟。
⚠️ 注意事项:
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二抗需根据一抗种属选择(如兔源一抗对应抗兔二抗)。
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避免长时间曝光导致背景过高。
8. 显影与结果分析
操作步骤:
1) ECL化学发光法:
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将ECL A液和B液等体积混合,均匀滴加在膜上。
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暗室中曝光X光胶片,或使用化学发光成像仪采集信号。
2) 结果分析:
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使用ImageJ软件定量条带灰度值。
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内参蛋白(如β-actin、GAPDH)校正目标蛋白表达量。
⚠️ 注意事项:
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显影液需现用现配,避免失效。
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多次曝光调整曝光时间(5秒-10分钟)。
全膜&裁膜示例



