一、实验原理一、实验原理
Western Blot基于SDS-PAGE电泳分离蛋白和抗原-抗体特异性结合两大核心原理:
电泳分离:SDS(十二烷基硫酸钠)使蛋白质带负电荷,在聚丙烯酰胺凝胶中按分子量大小迁移。
转膜:将凝胶中的蛋白条带转移到固相膜(如PVDF或NC膜)上,便于后续抗体结合。
抗体检测:一抗特异性结合目标蛋白,二抗(偶联酶或荧光基团)结合一抗,通过底物显色或化学发光检测信号。
二、详细实验步骤

Western blot 标准流程图(图片来源于网络)
1. 样本制备
关键点:保持蛋白完整性,避免降解!
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细胞样本:
1) 细胞裂解:使用预冷的RIPA裂解液(含蛋白酶抑制剂),冰上裂解30分钟。
2) 离心:4℃、12000×g离心15分钟,取上清。
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组织样本:
1) 液氮研磨组织至粉末,加入裂解液匀浆。
2) 同上离心取上清。
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定量:BCA法测定蛋白浓度,调整至统一浓度(如2μg/μL)。
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变性:加入5×SDS上样缓冲液,95℃煮样5-10分钟,-20℃保存备用。
⚠️ 注意事项:
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全程冰上操作,防止蛋白降解!
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裂解液需新鲜加入蛋白酶抑制剂(如PMSF)。
2. 配胶(SDS-PAGE凝胶制备)
关键点:根据目标蛋白分子量选择凝胶浓度(参考下表):
操作步骤:
1) 分离胶配制(以10%为例):
2) 浓缩胶配制(5%):
⚠️ 注意事项:
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丙烯酰胺有神经毒性,戴手套操作!
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APS和TEMED需现用现加,促进聚合。
3. 上样与电泳
操作步骤:
1) 将凝胶装入电泳槽,加入电泳缓冲液(1×Tris-Glycine-SDS)。
2) 每孔上样10-30μg蛋白(根据目标丰度调整),留一孔加预染蛋白Marker。
3) 电泳条件:
⚠️ 注意事项:
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上样前需离心样本去除气泡。
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电泳缓冲液可重复使用3-4次。
4. 转膜(湿转法为例)
关键点:确保蛋白高效转移至膜上!
操作步骤:
1) 裁剪PVDF膜和滤纸至凝胶大小,PVDF膜需提前用甲醇激活15秒。
2) 组装转膜“三明治”结构(从负极到正极):
海绵垫 → 滤纸 → 凝胶 → PVDF膜 → 滤纸 → 海绵垫
3) 转膜条件:
恒流200-300mA,转膜时间根据蛋白分子量调整(100 kDa以下:1小时;100 kDa以上:1.5-2小时)。
4) 转膜后,用丽春红染色观察转膜效果(可选)。
⚠️ 注意事项:
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转膜全程在冰浴中进行,防止过热导致蛋白变性。
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膜与凝胶间避免气泡(可用滚轮赶出气泡)。
5. 封闭
目的:减少非特异性结合。
操作步骤:
1) 将膜浸入5%脱脂牛奶(TBST配制),室温摇床封闭1小时。
2) 封闭后,TBST洗膜3次,每次5分钟。
⚠️ 注意事项:
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磷酸化蛋白检测建议使用5% BSA封闭。
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封闭时间过长可能导致信号减弱。
6. 一抗孵育
操作步骤:
1) 一抗稀释:按说明书比例(通常1:1000)用封闭液稀释。
2) 将膜与一抗溶液置于4℃孵育过夜(或室温2小时)。
3) TBST洗膜3次,每次10分钟。
⚠️ 注意事项:
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一抗可回收保存(-20℃),重复使用3-5次。
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磷酸化抗体需4℃孵育过夜以提高灵敏度。
7. 二抗孵育
操作步骤:
1) HRP(辣根过氧化物酶)标记的二抗稀释(通常1:5000-1:10000),用封闭液配制。
2) 室温摇床孵育1小时。
3) TBST洗膜3次,每次10分钟。
⚠️ 注意事项:
8. 显影与结果分析
操作步骤:
1) ECL化学发光法:
2) 结果分析:
⚠️ 注意事项:
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显影液需现用现配,避免失效。
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多次曝光调整曝光时间(5秒-10分钟)。
全膜&裁膜示例

在Western Blot(WB)实验中,蛋白转膜(Transfer)步骤中膜的选择直接影响目标蛋白的吸附效率、信号强度和背景水平。以下是转膜膜的选择原则及常见类型对比:
小分子蛋白(<20 kDa):优先选择硝酸纤维素膜(NC膜)(孔径0.2 μm),防止小蛋白穿透膜导致信号丢失。
大分子蛋白(>50 kDa):选择PVDF膜(孔径0.45 μm),其更强的结合能力可减少蛋白丢失。
对于超大分子(>150 kDa),建议使用0.45 μm孔径的PVDF膜。
化学发光(ECL):NC膜和PVDF膜均适用,但NC膜背景更低。
荧光检测:优先选择低自发荧光的PVDF膜(需验证批次)。
显色法(如DAB):NC膜更常用。
膜的孔径决定蛋白结合效率:
0.45 μm:适合大多数蛋白(>20 kDa)。
0.2 μm:适合小分子量蛋白(<20 kDa),防止穿透损失。
甲醇活化:PVDF膜必须用甲醇活化以增强疏水性结合能力;NC膜无需活化。
转膜缓冲液:含甲醇的缓冲液更适合PVDF膜,而NC膜对无甲醇体系兼容性更好。
封闭剂选择:PVDF膜可能需更高浓度封闭剂(如5%脱脂奶粉或3% BSA)以降低背景。
成本:NC膜价格较低,适合常规实验;PVDF膜成本较高但更耐用。
重复使用:若需多次剥离/杂交(如检测多个靶标),优先选择PVDF膜。
蛋白特性:强疏水性蛋白可能更适合PVDF膜。
⚠️ 注意事项:
1)PVDF膜的预处理:
使用前需用100%甲醇浸泡1分钟,再用转膜缓冲液平衡。
未活化的PVDF膜蛋白结合效率显著降低。
2)避免膜污染:
操作时戴手套,避免直接接触膜表面(油脂或蛋白污染会增加背景)。
3)封闭优化:
PVDF膜需更长时间的封闭(1小时以上)以降低背景。
NC膜封闭时间可缩短(30-60分钟)。
4)膜保存:
NC膜易吸潮变脆,建议干燥密封保存。
PVDF膜可长期室温保存。
在Western Blot(WB)实验中,内参抗体(Housekeeping Antibodies)的选择至关重要,其作用是作为内源性对照,校正上样量差异、检测样本质量以及实验操作的稳定性。以下是内参抗体的选择原则:
不同样本类型(细胞、组织、物种等)中管家基因(Housekeeping Genes)的表达可能存在差异,需选择在目标样本中稳定表达的内参蛋白:
哺乳动物细胞/组织:常用β-actin、GAPDH、β-tubulin、HSP90、Histone H3等;
植物样本:常用Rubisco(核酮糖-1,5-二磷酸羧化酶)、Actin等;
线粒体/细胞器样本:COX IV(线粒体标志物)、VDAC(电压依赖性阴离子通道蛋白)等;
核蛋白:Lamin B1、Histone H3等;
膜蛋白:Na⁺/K⁺ ATPase等。
选择内参抗体时,需要考虑目的蛋白分子量的大小,通常应该保证内参蛋白要与检测的目的蛋白的分子量相差5 kDa以上(但勿差距太大)。
表达水平恒定:内参蛋白应在不同处理条件(如药物处理、基因敲除、不同生理状态)下表达量稳定,避免因实验干预而波动。
例如:GAPDH在某些代谢相关实验中可能不稳定,需改用β-actin或β-tubulin。
避免共迁移干扰:内参蛋白的分子量应与目标蛋白的分子量有明显差异,避免条带重叠。
单克隆 vs 多克隆抗体:
单克隆抗体特异性高,但灵敏度可能较低;
多克隆抗体灵敏度高,但需注意交叉反应风险。
验证数据:
选择经过WB验证的抗体(查看说明书中的验证结果)。
预实验确认抗体是否在目标物种中特异性结合,且条带单一(无杂带)。
通过敲除/敲低实验验证抗体特异性(如CRISPR/Cas9或siRNA处理后内参条带消失)。
抗体稀释比例:根据抗体说明书推荐的稀释比例优化实验条件。
二抗匹配:确保二抗与一抗的种属来源匹配(如兔源一抗需搭配抗兔二抗)。
检测灵敏度:内参蛋白的丰度通常较高,需避免信号过强导致过度曝光,可通过调整曝光时间或抗体浓度优化。
在复杂实验(如不同细胞器分离、特殊处理条件)或对结果严谨性要求较高时,建议使用两种以上内参蛋白,以提高数据可靠性。
例如:同时检测β-actin(细胞质)和Lamin B1(核蛋白)以分别校正不同组分。
不同物种的内参蛋白可能存在序列差异,需确认抗体是否适用于目标物种(如人、小鼠、大鼠等)。
跨物种使用前需查阅抗体说明书或通过序列比对验证交叉反应性。
查阅文献:参考同领域类似研究中常用的内参抗体。
预实验验证:通过预实验筛选内参抗体,确认其在不同样本组中的稳定性。
⚠️ 注意事项:
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避免使用磷酸化或修饰状态的内参蛋白(如磷酸化β-actin)。
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样本制备时需确保蛋白完整(避免反复冻融或过度降解)。
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内参抗体与目标蛋白需在同一张膜上检测,或使用Strip后重孵育。
通过以上原则选择合适的内参抗体,可显著提高Western Blot数据的准确性和可重复性。
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显色系统中含有HRP抑制剂,所用溶液和容器中避免含有叠氮钠
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显影液、定影液配制错误或放置时间太久;成像仪器参数设置错误;酶反应底物失效
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可换用灵敏度更高的PBST(或PBS)+5%BSA作为封闭稀释液
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换用灵敏度稍低的TBST(或TBS)+5%的脱脂奶粉作为封闭稀释液
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换用灵敏度稍低的TBST(或TBS)+5%的脱脂奶粉作为封闭稀释液
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翻译后修饰,如糖基化、磷酸化、前体蛋白剪切、泛素化等
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蛋白质本身性质,主要包括蛋白质本身的电荷影响、转录异构体的存在、同源或异源聚合体和复合体四个方面
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实验体系的影响,如分子量Marker不准、电泳影响、蛋白裂解提取过程中发生降解等
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四、实验必备试剂与仪器
试剂:RIPA裂解液、SDS-PAGE试剂盒、ECL显影液、一抗/二抗。
仪器:垂直电泳槽、转膜装置、化学发光成像仪。
附:WB实验口诀
配胶上样要精准,电泳转膜需低温;
封闭抗体不能少,显影分析见分晓!
按照此攻略操作,小白也能轻松上手WB啦,建议收藏备用!实验过程中若遇技术难题或异常结果,欢迎在评论区留下具体现象与实验参数,我们将提供专业解决方案与技术指导~ 🧪🔬

Western Blot
报告形式:原始扫描图片、整理图片、数据分析及报告。
服务项目:IP/COIP
报告形式:原始WB检测图、考染胶(质谱)、整理图片、数据分析及报告。